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Micro-Insert 3D在趨化性侵襲實(shí)驗(yàn)中的應(yīng)用與優(yōu)化

date:2026-03-23 11:45:11

 

理解細(xì)胞侵襲對(duì)于揭示腫瘤進(jìn)展和免疫細(xì)胞遷移的機(jī)制至關(guān)重要,這兩者都是疾病發(fā)展和治療反應(yīng)的核心。本方案描述了一種趨化性驅(qū)動(dòng)的侵襲實(shí)驗(yàn),使用3D自插式微孔插件 (micro-Inserts 3D for self-insertion),插件內(nèi)并填充I型膠原蛋白(collagen I)基質(zhì),用于評(píng)估Jurkat T細(xì)胞的遷移行為。

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代表快速遷移淋巴細(xì)胞的Jurkat細(xì)胞被接種在膠原凝膠的頂部,并通過相鄰儲(chǔ)液池中不同濃度的胎牛血清(FCS)產(chǎn)生的血清梯度進(jìn)行刺激。24小時(shí)后,通過成像和深度量化評(píng)估細(xì)胞向膠原基質(zhì)內(nèi)的侵襲情況。與化學(xué)均質(zhì)環(huán)境中的細(xì)胞相比,暴露于FCS梯度的細(xì)胞顯示出顯著更深的侵襲,這與血清的絕對(duì)存在與否無關(guān)。

該設(shè)置模擬了3D環(huán)境中的趨化性侵襲,突顯了方向性信號(hào)在促進(jìn)細(xì)胞通過細(xì)胞外基質(zhì)組分進(jìn)行主動(dòng)遷移中的作用。該方案提供了一個(gè)強(qiáng)大且可重復(fù)的平臺(tái),用于在生理相關(guān)條件下研究免疫細(xì)胞遷移和腫瘤微環(huán)境相互作用











1. 實(shí)驗(yàn)材料









1.1 試劑和緩沖液

  • 3D自插式微孔插件micro-Inserts 3D for self-insertion (80499, ibidi GmbH)

  • μ-Plate 24 Well, ibiTreat (82426, ibidi GmbH)

  • Collagen Type I, Bovine (I型膠原,牛源) (50303, ibidi GmbH)

  • Jurkat細(xì)胞(ACC 282, DSMZ GmbH)

  • RPMI 1640培養(yǎng)基(21875034, Gibco, Thermo Fisher Scientific)

  • 胎牛血清(FCS, 10270106, Gibco, Thermo Fisher Scientific)

  • 10× RPMI 1640培養(yǎng)基 (R1145, Sigma)

  • 超純水配制的NaOH (1 M)

  • NaHCO?7.5% (S8761, Sigma)

  • 無菌超純水

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1.2 設(shè)備

  • 細(xì)胞培養(yǎng)箱(加濕,37°C,5% CO?)

  • 標(biāo)準(zhǔn)細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)備(無菌操作臺(tái),細(xì)胞消化試劑盒,培養(yǎng)瓶,帶合適吸頭的移液器等)

  • 冷卻的鋁珠或冰塊











2. 實(shí)驗(yàn)步驟









每個(gè)實(shí)驗(yàn)需制備三種不同的樣本,每種樣本均設(shè)置三個(gè)重復(fù)

1.梯度樣品 (-/+):僅在micro-Insert 3D的外側(cè)孔中添加趨化因子(本例中為10% FCS)。

2.均一分布樣品 (+/+):整個(gè)樣品(即外側(cè)孔、內(nèi)側(cè)孔和凝膠基質(zhì)中)均含有10% FCS。

3.無趨化因子樣品 (-/-):培養(yǎng)基和凝膠中均不添加FCS。

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圖1:三種實(shí)驗(yàn)條件的示意圖(上:-/+,中:+/+,下:-/-):細(xì)胞被接種在3D微孔插件內(nèi)的3D膠原基質(zhì)上。上(-/+):在微孔插體的外側(cè)孔中加入趨化因子溶液,并讓細(xì)胞侵入基質(zhì)1-3天(具體時(shí)間取決于細(xì)胞類型)。中(+/+):在微孔插體的內(nèi)側(cè)和外側(cè)孔中均加入趨化因子溶液(形成均一濃度環(huán)境)。下(-/-):未加入任何趨化因子。


2.1 樣本制備

  • 將九個(gè)micro-Inserts 3D分別放入µ-Plate 24 well 24孔培養(yǎng)板的孔中。輕輕按壓每個(gè)插件以去除截留的氣泡,并確保其與表面牢固接觸。

  • 向培養(yǎng)板的空余孔中填充無菌水或PBS,以減少孵育期間的蒸發(fā)。


2.2 膠原凝膠制備

在開始制備凝膠前,請(qǐng)閱讀I型膠原蛋白(Collagen Type I)說明書。

本實(shí)驗(yàn)需要制備兩種膠原凝膠混合物:

  • 不含血清(用于-/+和-/-樣品)

  • 含10%胎牛血清(FCS)(用于+/+樣品)

重要提示:膠原凝膠的移液操作

進(jìn)行膠原凝膠移液時(shí),請(qǐng)務(wù)必使用預(yù)冷的移液器吸頭(4°C)。

對(duì)于I型膠原凝膠的制備,由于凝膠粘度高,建議所有步驟均采用反向移液法。將移液器按壓至第二壓力點(diǎn),使整個(gè)吸頭充滿凝膠。排液時(shí)僅需按壓至第一壓力點(diǎn),雖然此時(shí)槍頭內(nèi)會(huì)殘留少量膠原液(需棄去),但這種方法能確保排出的膠原體積更加精確。我們推薦使用Eppendorf Visco Tips或Gilson Microman E等產(chǎn)品。 

請(qǐng)注意,即使在4°C下,凝膠混合物也最多只能在5分鐘內(nèi)使用,之后便會(huì)開始部分凝膠。

1.按照表1的配比,制備膠原混合液(1.5 mg/ml牛源膠原,含或不含10%血清)。請(qǐng)按表1所列順序添加各組分,并用移液器充分混勻,操作時(shí)置于冰上以延緩凝膠化。

2.向每個(gè)micro-Insert 3D的內(nèi)側(cè)孔中加入20 μl混合液。為確保形成平整的膠原層,將移液器垂直對(duì)準(zhǔn)孔中央進(jìn)行加樣。

3.蓋上培養(yǎng)板蓋子,將培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱中聚合約30分鐘。


注意:如需便捷地計(jì)算不同膠原濃度,可直接使用ibidi官網(wǎng)提供的ibidi膠原濃度計(jì)算器(ibidi Collagen Calculator)。


表1:配制300 μl含或不含F(xiàn)CS的1.5 mg/ml I型膠原基質(zhì)的移液方案

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2.3 細(xì)胞接種

1.在凝膠聚合期間,按常規(guī)方法收集細(xì)胞。

2.制備兩份細(xì)胞懸液,濃度為3 × 10?細(xì)胞/ml:

  • 細(xì)胞懸液1:使用無血清培養(yǎng)基(用于 -/- 和 -/+ 樣品)

  • 細(xì)胞懸液2:使用含10% FCS的培養(yǎng)基(用于 +/+ 樣品)

3.從培養(yǎng)箱中取出培養(yǎng)板,在顯微鏡下確認(rèn)凝膠聚合情況。如果基質(zhì)未完全聚合,可再孵育10-15分鐘。

4.按以下方式向每個(gè)micro-Insert 3D的外側(cè)孔中填充250 μl培養(yǎng)基:

  • 對(duì)于 -/- 樣品:使用無血清培養(yǎng)基

  • 對(duì)于 -/+ 和 +/+ 樣品:使用含10% FCS的培養(yǎng)基

5.向每個(gè)孔的凝膠基質(zhì)上方加入25 μl相應(yīng)的細(xì)胞懸液。注意避免移液器吸頭觸碰凝膠基質(zhì)。

6.蓋上培養(yǎng)板蓋子,將培養(yǎng)板放回培養(yǎng)箱。讓細(xì)胞侵入凝膠24小時(shí)。











3. 成像










1.24小時(shí)后,使用相差顯微鏡記錄細(xì)胞在凝膠基質(zhì)中的侵襲情況。

2.對(duì)于每個(gè)micro-Insert 3D插件中部選擇三個(gè)隨機(jī)的XY位置(膠原層平整處)。在每個(gè)位置采集一個(gè)z-stack,從凝膠頂部(細(xì)胞聚焦處)開始,一直掃描到孔的底部,Z軸步長(zhǎng)為13 µm。

注意: 相鄰圖像之間的z間隔應(yīng)大致等于單個(gè)細(xì)胞的直徑(約8–15 µm),以確保最終圖像堆棧中能捕獲所有細(xì)胞。 

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圖 2:在FCS梯度(-/+)條件下,Jurkat細(xì)胞浸潤(rùn)進(jìn)入凝膠基質(zhì)24小時(shí)的Z軸堆疊掃描(z-stack)代表性圖像。在micro-Insert 3D內(nèi)的同一位置,于不同Z平面上采集的相差顯微鏡圖像。第一張圖像(0 µm)顯示細(xì)胞位于凝膠基質(zhì)頂部。在隨后的圖像中,只有浸潤(rùn)到指定深度的細(xì)胞處于聚焦?fàn)顟B(tài)。圖像使用Zeiss Axio Observer Z1顯微鏡配備40× LD Plan-Neofluar物鏡拍攝。











4. 評(píng)估結(jié)果









為評(píng)估細(xì)胞對(duì)趨化因子FCS的侵襲響應(yīng),需為每個(gè)孔計(jì)算一個(gè)深度分?jǐn)?shù),該分?jǐn)?shù)基于各z平面圖像中處于焦平面的細(xì)胞數(shù)量,反映細(xì)胞向基質(zhì)內(nèi)的侵襲深度。

侵襲指數(shù)的計(jì)算方法為:將每個(gè)深度h處(nh)的(處于焦平面的)細(xì)胞總數(shù)乘以對(duì)應(yīng)的深度h(單位為µm),并除以所有深度內(nèi)細(xì)胞的總數(shù)(N):

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圖3:Jurkat細(xì)胞在FCS梯度下的趨化驅(qū)動(dòng)侵襲。柱狀圖顯示平均侵襲指數(shù)。數(shù)據(jù)表示24小時(shí)后的平均值+SEM(標(biāo)準(zhǔn)誤)(n = 2個(gè)獨(dú)立實(shí)驗(yàn),每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)三次)。結(jié)果顯示,與處于FCS濃度均一環(huán)境下的樣本相比,暴露于FCS梯度的細(xì)胞向膠原基質(zhì)內(nèi)的侵襲深度顯著更深。注:在本示例中,對(duì)于橫跨多個(gè)層面(slices)的細(xì)胞,僅在細(xì)胞中心平面聚焦的層面進(jìn)行一次計(jì)數(shù)。











5. 總結(jié)










這種使用micro-Insert 3D進(jìn)行的趨化性驅(qū)動(dòng)侵襲實(shí)驗(yàn),為定量分析3D膠原基質(zhì)中的免疫細(xì)胞遷移提供了一種可靠且具有生理相關(guān)性的方法。在不同血清條件下觀察到的浸潤(rùn)深度差異,突顯了方向性信號(hào)(directional cues)在細(xì)胞運(yùn)動(dòng)中的重要性。該方案非常適用于趨化行為的對(duì)比研究,并可針對(duì)其他細(xì)胞類型或趨化因子進(jìn)行調(diào)整,從而探索細(xì)胞侵襲及微環(huán)境相互作用的多個(gè)維度。

 

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